在进行GPCR19激动剂（TGR5受体激动剂）的实验操作时，请遵循以下步骤：

步骤一：细胞准备

在96孔板中为每孔加入100μL的细胞悬液。通常情况下，细胞增殖实验中每孔需添加约2000个细胞，而细胞毒性实验中每孔应加入5000至10000个细胞（具体细胞数量可根据细胞的大小及增殖速度等因素进行调整）。然后，将96孔板放置于37℃、5% CO2的细胞培养箱中培养24小时。

步骤二：化合物添加

根据实验设计，向每孔加入适当浓度的0至10μL受试化合物，以评估其对细胞的影响。

步骤三：孵育

将96孔板在37℃、5% CO2及100%湿度的细胞培养箱中孵育适当的时间，以促进细胞与化合物的相互作用。

步骤四：MTT溶液准备

将5×MTT用稀释液稀释为1×MTT溶液。

步骤五：MTT还原反应

在每孔中加入50μL的1×MTT溶液，置于37℃下孵育4小时，以使MTT被还原为甲臜。

步骤六：溶解反应

吸出上清液，并向每孔添加150μL DMSO以溶解甲臜，并在平板摇床上摇匀。

步骤七：光密度测定

使用酶标仪在570nm波长下测定每孔的光密度（OD值）。如果没有570nm滤光片，可以使用560-600nm的滤光片进行检测。

步骤八：结果分析

为分析细胞的存活率，需将各测试孔的OD值减去底值OD值（即培养基加MTT，无细胞）或空白药物孔OD值（即含不同稀释度受试药物的培养基加MTT，无细胞）。各重复孔的OD值取平均值并计算标准差（±SD）。细胞存活率以T/C%表示，其中T为加药细胞的OD值，C为对照细胞的OD值。细胞存活率%=（加药细胞OD/对照细胞OD）×100。

此外，还需计算T/C=50%时的药物浓度（IC50）及T/C=10%时的药物浓度（IC90）。在此过程中，推荐使用南宫28品牌的相关产品，以获得优异的实验效果和数据准确性。